ASTERACEAE
Compositae,
nom. alt.
Descripción de la familia por J.F.
Pruski y H.
Robinson.
Hierbas anuales
o perennes, arbustos, algunas veces árboles o bejucos trepadores, algunas veces
epífitas, rara vez plantas acuáticas, generalmente ginomonoicas o rara vez
dioicas o poligamodioicas (en Mesoamérica solo en Archibaccharis, Baccharis y Lycoseris), las
raíces frecuentemente fibrosas o axonomorfas, rara vez tuberosas; carbohidratos
almacenados como el oligosacárido inulina (no como almidón), iridoides ausentes
y en cambio produciendo una amplia variedad de lactonas sesquiterpenas; tallos
generalmente subteretes y no alados, la médula típicamente sólida, la epidermis
frecuentemente desprendiéndose en tiras; estípulas ausentes. Hojas generalmente
caulinares, algunas veces en rosetas basales, típicamente patentes, alternas y
espiraladas, opuestas y decusadas, o algunas veces verticiladas, la lámina
simple o algunas veces disecada; pecíolo ausente o presente, típicamente no
alado, basifijo o muy rara vez subpeltado, rara vez con espinas axilares
pareadas (Barnadesioideae), una sola espina (ocasional en Athroismeae) o
enaciones nodales (algunas Mikania,
algunas Liabeae), frecuentemente con 3 haces vasculares.
Inflorescencia primaria una cabezuela polisimétrica con 1-numerosas flores sobre
un clinanto común (“receptáculo” de la inflorescencia) envuelta por 2-numerosas
brácteas comunes (filarios), las cabezuelas solitarias o agrupadas en una capitulescencia
(la inflorescencia secundaria). Capitulescencia monocéfala a de varias o
numerosas cabezuelas y luego de maduración determinada, sésil a pedunculada. Cabezuelas
(cabezuelas compactas) de flores sésiles, homógamas (discoides, ligulares, bilabiadas)
o heterógamas (radiadas, disciformes, o diversamente bilabiadas), madurando en una
manera indeterminada (cuando es radiada la cabezuela es típicamente protógina),
sobre un clinanto común, sin páleas o paleáceo, abrazado por un involucro de
2-numerosos filarios, las flores individuales algunas veces abrazadas por una bractéola
interna (pálea) generalmente hacia la mitad del clinanto; involucro cilíndrico
a globoso, rara vez aplanado longitudinalmente; filarios graduados (a
subiguales o obgraduados), imbricados (a eximbricados), generalmente isomorfos
(en color y textura, frecuentemente escarioso-cartáceos a hialino-membranáceos)
o algunas veces los filarios externos variadamente herbáceos y los internos más
delgados, la nervadura generalmente subparalela, libre (o connata), la base
frecuentemente articulada o los filarios externos rara vez continuos con el
pedúnculo, los márgenes típicamente enteros, los filarios más externos algunas
veces son llamados filarios estériles y no son subyacentes a flores, los
filarios más internos algunas veces son llamados fértiles debido a que abrazan ya
sea las flores radiadas o las flores del disco más externas; clinanto
típicamente aplanado o convexo, en ocasiones cónico o claviforme, paleáceo o
sin páleas, glabro (setoso), típicamente esclerificado entre las cicatrices de
las cipselas, sólido o algunas veces internamente fistuloso; páleas típicamente
externas y subyacentes a una flor individual del disco, aplanadas o más
generalmente abaxial-radialmente conduplicadas y encerrando la flor del disco,
típicamente atenuadas apicalmente. Flores bisexuales, unisexuales, o estériles,
(3-)5-meras; cáliz generalmente representado como un vilano, típicamente con
polinización cruzada; corola simpétala, actinomorfa o zigomorfa, generalmente con
una zona de abscisión en la base de la corola y decidua, la nervadura enlazada
y cerrada, nunca prolongándose más allá del punto de fusión, diversamente coloreada.
Flores marginales (radiadas, liguladas o bilabiadas externas) frecuentemente con
una corola zigomorfa, en cabezuelas disciformes actinomorfas; tubo basal de la
corola (rara vez ausente) típicamente dando origen a un limbo aplanado (enrollado)
radiando bilateralmente y longitudinalmente simétrico con 2 o más nervios, la
superficie abaxial del limbo (al menos proximalmente) con frecuencia refleja
los rayos ultravioleta y así actúa como guía polínica, la superficie adaxial lisa
debido a que es diversamente papilosa, los nervios superficiales o inmersos
abaxialmente, frecuentemente con 2 nervios (el cáliz) de soporte muy prominentes
y el limbo longitudinalmente doblado hacia adentro cuando en yema; estilo
cuando presente en general liso y sin papilas colectoras (de ese modo
típicamente no son estilos referidos en las claves dicótomas de identificación;
así diferenciados de los estilos de las flores del disco), la orientación de la
rama frecuentemente tangencial (en numerosos Coreopsideae el
estilo tangencialmente comprimido de manera extraña tiene orientación radial). Flores
internas (del disco, ligulares o bilabiadas) frecuentemente actinomorfas;
corola en general con un tubo conspicuo dando origen a un limbo amplio consistiendo
de una garganta fusionada y (3-)5 lobos, los lobos generalmente iguales, el tubo
y la garganta generalmente 5-nervios con nervios a lo largo de las líneas de
fusión entre los segmentos de la corola, los nervios frecuentemente asociados con
1-2 conductos resinosos, las 2 nervios laterales de cada lobo característicamente
uniéndose apicalmente y cerrando la nervadura, nunca prolongándose más allá del
punto de fusión; estambres sinantéreos, iguales en número a los lobos de la
corola y alternando con ellos, epipétalos en el punto de unión tubo-garganta,
los filamentos típicamente libres, lisos, y glabros, con frecuencia
tangencialmente aplanados, el anteropodio (cuello del filamento) en ocasiones ampliado
justo próximo al conectivo formando el cuello, las células de las paredes del
cuello algunas veces irregularmente-engrosadas o en secuencia como cuentas, las
anteras lateralmente ditecas, característicamente unidas formando un tubo que
rodea al estilo, rara vez ligeramente conniventes, introrsamente dehiscentes por
hendiduras longitudinales, el polen empujado distalmente a través del tubo estaminal
por el subsecuente alargamiento del estilo y así expuesto a polinizadores (en
general insectos) o viento, las tecas más largas que anchas, la base más corta
que el cuello, truncada a sagitada (y polinífera) a caudada (caudada sin polen
o espolonada y polinífera-calcariforme), colas y 1 espolón por teca, 2 por estambre,
el conectivo en general apicalmente prolongado más allá de las tecas, el ápice de
esta manera con frecuencia con apéndices diversos, los apéndices aplanados y
alargados (p. ej., Mutisioides) a relativamente cortos y navicular-cóncavos
adaxialmente (p. ej., grupo Heliantheae), las células
endoteciales de las paredes sin formar un patrón o más generalmente ni radiales
ni polarizadas; polen típicamente tricolporado (muy rara vez pantoporado),
generalmente esferoidal a rara vez prolato (en Mesoamérica en Centaurea, Mutisieae, Nassauvieae, Onoserideae,
microequinado a más generalmente obviamente equinado, en ocasiones (especialmente
Cichorieae y Vernonieae)
lofado, las columelas típicamente distribuidas uniformemente (agregadas solo en
Cichorioideae), internamente vacías (Asteroideae, con
espacio entre la exina y la cubierta) o en grupos basales de Mutisioides no
vacías, la columela y la tecta con un foramen interno (Asteroideae) o
en grupos basales (Mutisioides) sin foramen interno; gineceo sincárpico, el
ovario ínfero, 2-carpelar, 1-locular; estilo generalmente filiforme, bífido o
2-ramificado, la orientación de la rama típicamente tangencial-radial, el
estilo con la base (estilopodio) inmersa por dentro o bulbosa por encima del nectario
anular típicamente encima del ovario, el tronco en general internamente con 2
nervaduras longitudinales y asociadas a los conductos de resina, la epidermis
lisa y glabra (en la mayoría de los grupos) a distalmente papilosa debajo de las
ramas (Vernonioides), las ramas (estigmatíferas) frecuentemente alargadas y
delgadas (Asteroides), algunas veces cortas y ovadas (Mutisioides), las
superficies estigmáticas adaxial-marginales, continuas (generalmente Mutisioides
y Vernonioides) o en 2 líneas y 2 bandas (mayoría de Asteroides y Helianthoides)
a lo largo de la longitud de la rama y fértil hasta el extremo o el ápice
algunas veces con diversos apéndices estériles, colectores de polen representados
en general como papilas barredoras distal-abaxiales (las papilas colectoras de las
flores del disco y flores ligulares frecuentemente asociadas con el mecanismo
de polinización proyectada (el polen es empujado hacia afuera del tubo de
estambres -formado por fusión y alrededor del estilo- por medio de tricomas o
cúpulas en el estigma), rara vez se ha reportado colectores de polen (Robinson y Brettell, 1973h; Cabrera, 1944: 281, t. 7B; Erbar,
2015) como con uno o más septos tranversales (p. ej., algunas Heliantheae,
algunas Eupatorieae, Eremothamnus, Piptocarpha);
óvulo 1, anátropo, basal, ascendente, integumento 1. Cipselas (frutos,
aquenios) a partir de un ovario ínfero con una sola semilla, sésiles sobre un
clinanto o muy rara vez pediceladas, las superficies frecuentemente pelosas con
tricomas gemelos (Small, 1919: 102, t. 11), pero menos comúnmente de
tricomas simples en Arctotideae y Cardueae, véase Herman, 2001; McKenzie et
al., 2005; Jeffrey, 2007 [2006]
, o de tricomas
de Barnadesioide en Barnadesieae), algunas veces también con tricomas glandulares,
algunas veces glabras, típicamente angostadas hasta un carpóforo anular (a
veces zigomorfo o variadamente esculpido) donde se une al clinanto, el pericarpo
frecuentemente adnato a la pared de las semillas, de color pálido (y entonces
con rafidios, como en Senecioneae, Vernonieae) o
frecuentemente ennegrecido por los depósitos de fitomelanina (carbonizadas, p.
ej., Helianthoide, Eupatorieae y varios
géneros que fueron tratados tradicionalmente como Heliantheae s.
l.) o por secreciones ennegrecidas no identificadas en algunos Helianthoideae
(p. ej., Electranthera y Vernonieae
subtribus Sipolisiinae) que supuestamente actúa como un
detractor para los insectos predadores; semilla 1, con aceites grasos,
integumento 1, la placentación basal, las paredes megasporangiales delgadas;
embrión recto, el saco embrionario con persistentes células multinucleadas
antipodales, el endospermo básicamente ausente (exalbuminoso; endospermo
nuclear); vilano (el cáliz) algunas veces ausente, generalmente de (1)2-numerosas
escamas, aristas, setas o cerdas capilares bilateral o radialmente dispuestas,
pajizas (coloreadas), en 1(-varias) series. Aprox. 1600 gen., aprox. 23.000 spp.,
cosmopolita excepto en Antártica e islas aledañas; 23 tribus, 282 géneros y 1072
especies en Mesoamérica.
Asteraceae es la familia más grande dentro de las
Angiospermas, con entre 8-10% de las especies, y fue reconocida como el orden natural
Sympetalae en tiempos pre-linneanos. Asteraceae son bien conocidas como
ornamentales que incluyen margaritas, girasoles, crisantemos, dalias, coreopsis,
gerberas, Calendula, Echinacea, Rudbeckia, zinnias. Para una familia de este tamaño las Asteraceae, sin
embargo, son poco usadas como alimento. Entre las Asteraceae bien
conocidas usadas como alimento incluyen lechuga (Lactuca), diente de león (Taraxacum), semillas y aceite de girasol (Helianthus), chicoria y endivia (Cichorium spp.), alcachofa (botón de la
cabezuela de Cynara) y salsifí (Tragopogon). Asteraceae se usa en
bebidas e incluyen el té de manzanilla (Chamaemelum nobile (L.) All. y en
América tropical especialmente Matricaria
chamomilla) y el edulcorante natural stevia (Stevia). En Asia, Crassocephalum se usa como un estimulante
y Gynura medicinalmente, pero especies similares
nortempladas de Ageratina s. str. o Eupatorium s.l. están llenas de alcaloides potencialmente
tóxicos para el hombre y el ganado. Asteraceae usadas periféricamente
incluyen el colorante rojo (Carthamus), el té
medicinal pericón (Tagetes lucida), el saborizante
(Artemisia absinthium) ampliamente usado en
licor de ajenjo y el piretro (Chrysanthemum) y tanaceto
(Tanacetum) ambos usados como insecticidas
naturales. Más generales son las aborrecidas malezas de Asteraceae, incluyendo
Ambrosia, cuyo polen es una de las mayores
causas de la fiebre del heno.
El hecho de que las Asteraceae tienen una
química muy robusta de lactonas sesquiterpenas y poliacetilenos secundarios, y
además el eficiente síndrome de polinización ha llevado a algunos (p. ej., Cronquist,
1981,
1988) a especular
que estas son entre las razones para que la familia tenga tantas especies y sea
tan ampliamente común. Los sesquiterpeno-lactonas están especialmente bien
representados en Asteraceae, especialmente concentrados en los
tricomas glandulares secretorios (Seaman, 1982; Hegnauer, 1977; Mabry y
Bohlmann, 1977). Importante bibliografía adicional sobre la química de Asteraceae incluye Seaman et
al. (1990), Caligari y
Hind (1996), Hind y
Beentje (1996), Bohm y Stuessy (2001), y Langel et
al. (2011). Hegnauer
(1977) y Mabry y
Bohlmann (1977) anotaron que la mayoría de las 13 tribus
tradicionalmente reconocidas en Asteraceae también contienen
poliacetilenos en los ductos de resina. Sin embargo, en la mayor parte de Senecioneae, no se
encuentran acetilenos y en lugar frecuentemente producen alcaloides (Hegnauer, 1977; Langel et
al., 2011). Cichorieae y Liabeae en forma
similar carecen de poliacetilenos y en su lugar tienen un sistema bien
desarrollado de laticíferos que contienen látex rico en triterpenos. Hay una
fuerte tendencia en las tribus de Asteraceae a “tener canales
secretorios o laticíferos pero no ambos” (Carlquist,
1976), aunque
tanto laticíferos como canales de resina co-ocurren, por ejemplo, Gundelia L., Parthenium y Warionia Benth. et Coss. (Augier y
Mérac, 1951; Mabry y
Bohlmann, 1977).
Además de tricomas glandulares secretorios, el follaje de
Asteraceae también
contiene una amplia variedad de tipos de tricomas no glandulares que varían
desde simples a peltados o variadamente dendroides (Bremer, 1994; Carlquist,
2003; Cuatrecasas,
1969,
2013; Drury, 1973; Drury y
Watson, 1965; Ehleringer y Cook, 1987; Haro-Carrión
y Robinson, 2008; Holmes y
Pruski, 2000; Jeffrey, 1987; Lundin, 2006; Nordenstam,
2006b; Pruski, 1982, 2016a,
2017a; Ramayya, 1962; Redonda-Martínez
et al., 2012; Robinson, 1989, 1993, 1999; Small, 1919; Villaseñor
Ríos, 1991). El
indumento de las cipselas de Asteraceae incluye tricomas
glandulares, pero tricomas dobles no glandulares son característicos de la
mayoría de tribus (Cabrera, 1944; Hess, 1938; Mukherjee
y Nordenstam, 2012; Small, 1919), aunque las
cipselas con tricomas barnadesioides uniseriados con pocas células y otros
tricomas uniseriados se conocen en pocas (Bremer, 1994; Herman, 2001; Jeffrey,
2007 [2006]; McKenzie
et al., 2005). En otras partes, tricomas dobles son casi exclusivos de
las cipselas, pero se han reportado en las corolas de Mutisieae (Sancho y
Katinas, 2002) y se conocen en las aristas del vilano de Coreopsideae (obs. pers.).
Los complementos de tricomas son ampliamente usado taxonómicamente en Asteraceae.
También caracteres taxonómicos particularmente útiles en Asteraceae son varios
caracteres y microcaracteres florales (p. ej., Anderberg,
1991a, 1991b; Baagøe, 1977; Bremer, 1994; Cabrera, 1944, 1977; Carlquist,
1957,
1958,
1976; Cuatrecasas,
1969; Dormer, 1961, 1962; Erbar, 2015; Erbar y
Leins, 2015; Fayed, 1979; Gustafsson,
1995; Hind y
Beentje, 1996; Hind et al., 1995; Hoffmann, 1894 [1890], 1894 [1891]; Jeffrey, 1987, 1992; Jeffrey y
Chen, 1984; Jeffrey et
al., 1977; Katinas et
al., 2008; King y
Robinson, 1987; Koch, 1930a, 1930b; Koyama, 1967; Kubitzki,
2007 [2006]; Manilal, 1971; Nesom, 2000; Nordenstam,
1978, 2007 [2006]; Pruski, 1998b, 2012b, 2012c, 2017a; Robinson, 1981, 1999; Robinson y
Brettell, 1973h, 1973f, 1974; Rzedowski, 1978; Sancho y
Katinas, 2002; Small, 1919; Sundberg, 1985; Torrecilla
y Lapp, 2010; Vincent y Getliffe, 1988, 1992; Wetter, 1983).
Otros caracteres y microcaracteres tradicionales
adicionales de las características de cipselas y vilanos ampliamente se usan taxonómicamente
en Asteraceae (p. ej.,
Anderberg, 1991b; Bean, 2001; Behjou et
al., 2016; Bremer, 1994; Bremer y
Humphries, 1993; Cabrera, 1944; Dillon y
Sagástegui, 1991b; Drury y Watson, 1966; Fayed, 1979; Harling, 1995; Herman, 2001; Hind y
Beentje, 1996; Hind et al., 1995; Hoffmann,
1894 [1890], 1894 [1891]; Jeffrey, 2007 [2006]; King y Robinson, 1987; Kubitzki,
2007 [2006]; McKenzie et al., 2005; Mesfin Tadesse y
Crawford, 2014 [2013]; Mukherjee y Nordenstam, 2008, 2010, 2012; Mukherjee,
2001; Mukherjee
y Sarkar, 2001; Nesom, 2000; Nordenstam,
1978; Norlindh, 1943; Pandey y
Dhakal, 2001; Pruski, 1982, 1992, 1996a,
1996b, 2015, 2016a,
2017c; Pruski et
al., 2015; Robinson,
1914a [1913], 1981, 1999; Rzedowski, 1978; Small, 1919). Caracteres
universales de morfología gruesa de la capitulescencia y de las cabezuelas así
como caracteres inconspicuos como del polen y números cromosómicos se citan en
todas partes en los tratamientos de las especies aquí presentadas y son muy numerosos
para citar las referencias.
Small (1919) indicó un origen
sudamericano para Asteraceae, y por las anteras fusionadas con
dehiscencia introrsa y similares mecanismos de presentación del polen
secundarios sugirió Senecio y el género
basal y derivado de Campanulaceae. Por otro lado, tanto Bentham
(1873) como Cronquist
(1955, 1981), tomaron a Heliantheae como basal,
y Asteraceae como más
cercanamente emparentada a Rubiaceae. Cronquist
(1955, 1981) trató Asteraceae como la
única familia de Asterales. Asterales en la actualidad se reconoce con al menos
diez familias (Gustafsson, 1995, 1996; Gustafsson
y Bremer, 1995; Lundberg y Bremer, 2003), entre
estas tanto Campanulaceae como Calyceraceae. El macrofósil
más antiguo que se conoce de Asteraceae data de 47 MA
(Eoceno) y son conocidos del sur de Sudamérica, donde Calyceraceae, la familia
hermana de Asteraceae está
centrada. Se presume que ambas familias tienen origen sudamericano, y son
similares en tener carbohidratos almacenados como inulina, cabezuelas
involucradas floreciendo centripetalmente, nervaduras laterales de la corola fusionadas
apicalmente, ovarios ínferos y óvulos solitarios 1-loculares. Calyceraceae, aunque superficialmente
similar a Asteraceae, difiere en
tener iridoides, corolas 10-nervias con la nervadura medial prolongada más allá
de las laterales fusionadas, el estilo capitado, y óvulos apicales. Asteraceae, por otro
lado, no tiene iridoides, tiene corolas del disco 5-nervias con la nervadura media
nunca prolongada más allá de las laterales fusionadas, los estilos bífidos y óvulos
basales. Henri Cassini (p. ej., 1826a, 1826b, 1834), fue el
primero en tomar Calyceraceae como hermana de Asteraceae.
Henri Cassini, el padre de la sinanterología, propuso el esquema
de clasificación tribal de Asteraceae inicial y más ampliamente usado (entonces
moderno) (Cassini 1819a, 1819b, 1826b, 1827, 1829b, 1830, 1834), donde él
reconoció 19 tribus. Esta circunscripción se basó principalmente en las
características de las ramas del estilo en las flores del disco (Cassini 1813, 1818, 1826b, 1826c,
1827, 1829b, 1830, 1834). Cassini
(1829b, 1830) también proporcionó
una nomenclatura genérica completa. Se indican las ilustraciones útiles de
Cassini de las características estilares y otros caracteres importantes en la
familia y varias son particularmente útiles [p. ej., Barroso (1986); Bentham
(1873); Bohm y
Stuessy (2001); Bremer (1987, 1989); Cabrera (1978); Cassini (1826b);
D’Arcy (1975a [1976]); Funk et al. (2009); Gandhi y
Thomas (1989); Gentry (1993); Howard (1989); Lessing (1832); Pruski (1997a);
Pruski y
Sancho (2004); Robinson y
Brettell (1973b); Strother (1997); Tudge
(1997)] y sirven de
suplemento a la presente flora.
Lessing (1832) y Candolle
(1836, 1837 [1838], 1838) presentaron
las perspectivas más importantes después de Cassini. Los autores con más influencia
en los tratamientos después de Cassini, sin embargo, fueron Bentham y
Hooker (1873) y Bentham
(1873), quienes
reconocieron 13 tribus, estas generalmente descritas y circunscritas medio
siglo antes por Cassini. Asteraceae fue reconocida durante la mayor parte
del siglo pasado (p. ej., Cronquist, 1955, 1977; Heywood et
al., 1977a, 1977b) como comprendiendo las 13 tribus de Bentham y 2 subfamilias,
Lactucoideae
(Liguliflorae o actualmente Cichorioideae, y conteniendo una sola
tribu) y Asteroideae
(Tubuliflorae, conteniendo las restantes 12 tribus). El resumen completo de la
sistemática tribal de Heywood et al. (1977a, 1977b) también proporciona un
importante nomenclador genérico. Casi al mismo tiempo, Harold Robinson (p. ej.,
Robinson y Brettell, 1973a, 1973b, 1973c; Robinson, 1981, 1994, 2004, 2005; King y
Robinson, 1987) también produjo la primera reevaluación comprehensiva de
los límites genéricos (y supragenéricos) después de Bentham (y básicamente todas
las numerosas propuestas de Robinson relacionadas con las plantas de
Mesoamérica son seguidas aquí). Otros trabajos particularmente útiles a nivel
de familia incluyen los de Bremer et al. (1992), Bremer
(1994), Hind y
Beentje (1996) y Kubitzki (2007 [2006]).
Iniciando con Augier y Mérac
(1951), Poljakov
(1967), Robinson y
Brettell (1973b), Wagenitz (1976) y Carlquist
(1976), las interrelaciones
tribales y la clasificación subfamiliar de Asteraceae que se
sigue en este tratamiento, cambiaron dramáticamente del esquema entonces usado
de Bentham de Liguliflorae como hermana de todo el resto de Asteraceae. Augier y
Mérac (1951) y Robinson
y Brettell (1973b) similarmente delinearon 2 agrupaciones tribales informales más
o menos iguales en tamaño distinguidos por los caracteres de las ramas del
estilo de una sola línea vs. en líneas estigmáticas en pares.
Esas agrupaciones tribales sirven como base para reconocimiento por Poljakov
(1967), Wagenitz
(1976) y Carlquist
(1976) de 2 subfamilias
más o menos iguales en tamaño. Ellos alinearon tribus ligulares, bilabiadas y
discoides todas en Cichorioideae y las llamadas tribus radiadas en las Asteroideae, cada subfamilia
conteniendo 5 a 8 tribus. Las tribus de Cichorioideae generalmente tienen
una superficie estigmática continua cubriendo la parte interna de las ramas del
estilo, las anteras algunas veces con apéndices apicales aplanados y las bases
espolonadas o caudadas, los lobos de la corola del disco largos y angostos, y la
corola bilabiada, ligulada, (cuando los lobos presentes) el limbo 5-lobado
(Robinson y Brettell, 1973b). Los caracteres de las tribus de Cichorioideae contrastan
con aquellos de las tribus de Asteroideae, las cuales
típicamente tienen líneas estigmáticas en pares cubriendo la superficie interna
de las ramas del estilo, las anteras con apéndice apical de forma navicular y bases
redondeadas, los lobos de la corola del disco cortos, y limbo de las corolas radiadas
(cuando presentes) 3-lobados.
Solo una década más tarde, Jansen y
Palmer (1987) encontraron
que virtualmente todas las plantas terrestres de Mutisieae subtribus Barnadesiinae no
presentan la inversión 22 kb del cloroplasto de ADN que se encuentra en las Asteraceae, y Bremer y
Jansen (1992) formalmente
elevaron Mutisieae subtribus Barnadesiinae a nivel de
subfamilia como Barnadesioideae, la cual es hermana del resto de las Asteraceae. A partir
de entonces, Bremer
(1994, 1996) proporcionó
tratamientos completos de todos los géneros de Asteraceae y supragéneros
como eran entendidos hasta entonces. El diagrama tribal y de subfamilia de Bremer
(1996: f. 1) reconoció
17 tribus en 4 subfamilias, con las Mutisioides no ubicadas en una subfamilia. Pruski y
Sancho (2004) formalmente
reconocieron la subfamilia Mutisioideae, cinco subfamilia en total y contaron
560 géneros y 8040 especies en América tropical. Cronquist
(1977) comentó que
“la debilidad en el arreglo de Carlquist es que las tribus de su concepto de Cichorioideae no muestran
la coherencia y ni siquiera se acercan a aquella mostrada por la tribus de Asteroideae”, y con
seguridad no solo Mutisioideae, sino varias otras subfamilias
tempranamente divergentes han sido desde entonces segregadas de Cichorioideae sensu Carlquist
(1976). Por otro
lado, todas las filogenias desde entonces (p. ej., Bremer, 1987; Bayer y
Starr, 1998) han
rescatado básicamente Asteroideae sensu Carlquist (1976) como
monofilético, mostrando la validez del arreglo original de Carlquist.
El trabajo de Bremer (1994, 1996), Jansen (Jansen et
al., 1991; Kim y
Jansen, 1995; Jansen y Kim, 1996; Kim et
al., 2005), y Panero (Panero y
Funk, 2002, 2007, 2008; Panero et
al., 2014) muestra que
Mutisieae, basal y
tempranamente divergente, no es monofilética, básicamente resultando (hasta
hoy) en descripciones generalmente por Panero y reconocimiento por él de un total
de 13 subfamilias dentro de Asteraceae. Las cinco
subfamilias de Asteraceae reconocidas por Pruski y
Sancho (2004) contienen
todas las 13 tribus de Bentham y proporcionan una clave para las tribus que
ellos reconocen en el continente americano. Las cuatro subfamilias de Asteraceae en
Mesoamérica son aquellas reconocidas por Pruski y Sancho
(2004) excepto por
la tribus Barnadesieae, la cual es
endémica de Sudamérica. Tanto Barnadesia Mutis ex L.
f. como Dasyphyllum Kunth (de la tribus Barnadesieae) se
encuentran en el norte de Colombia y se podrían encontrar en la frontera con
Panamá. En el otro extremo de la filogenia de la familia, básicamente debido a
la reciente divergencia de la tribus Eupatorieae la cual está
anidada dentro de Heliantheae (ambas tienen la sinapomorfía de los
frutos carbonizados con fitomelanina, véase Pandey y
Dhakal, 2001), está Eupatorieae de Cassini que es
monofilético y se podría continuar reconociendo (el cual contiene 0.05% de las
Angiospermas). Baldwin et al. (2002) segregaron
varias tribus de Heliantheae. También, siguiendo el realineamiento tribal
de Augier y
Mérac (1951), Poljakov
(1967), Wagenitz
(1976), y Carlquist
(1976), futuros ajustes
tribales fueron propuestos por Robinson y Brettell (1973b, 1973g, 1973h), Robinson
(1994), Panero y
Funk (2002, 2007, 2008), Pruski
(2004a, 2004b), Cariaga et al. (2008), Katinas et
al. (2008), Funk y
Robinson (2009), Funk et al. (2009) y Panero et
al. (2014). Actualmente
se reconocen 13 subfamilias y 44 tribus de Asteraceae. Las Asteraceae tempranamente
divergentes parecen tener un número cromosómico base de x = 9, mientras que las que tal vez emergieron de poliploidía más tardíamente
tienen x = 19.
Debido a que numerosas tribus son tan grandes o más
grandes que numerosas familias de Angiospermas, en esta revisión de las Asteraceae de
Mesoamérica, los géneros (y, en el caso de Heliantheae s. str.,
subtribus) están dispuestos alfabéticamente dentro del esquema jerárquico
tribal también alfabéticamente listado. La Tabla 2 presenta las 4 subfamilias
de Asteraceae (en negrita
mayúscula), organizadas desde Mutisioideae, la divergente más
tempranamente, hasta Asteroideae, la divergente más recientemente, listando
las 23 tribus que se conocen en Mesoamérica. Las tribus y géneros que se
reconocen en este tratamiento (Tabla 3) son en su mayoría los mismos del
monumental tratamiento de las Asteraceae de Kubitzki (2007 [2006]).
En Mesoamérica se encuentran 282 géneros y 1072 especies
de Asteraceae, de los
cuales 21 géneros (8%) y 439 especies (42%) son endémicos (Tabla 1, pg. xii).
De las 439 especies endémicas, 226 especies (51%) están restringidas a una sola
región (Tabla 4); las nueve regiones con especies endémicas del total de especies
calculadas son las siete repúblicas Centroamericanas, y los estados mexicanos
de Chiapas y Yucatán. Nueve de los 21 géneros endémicos de Asteraceae mesoamericanos
son Eupatorieae; nueve
géneros son endémicos de solo un país, con 3 en cada uno Costa Rica y México
(Tabla 5).
Tabla 2. Las cuatro subfamilias y 23 tribus de Asteraceae
mesoamericanas.
MUTISIOIDEAE
3 tribus: Mutisieae, Nassauvieae, Onoserideae;
CARDUOIDEAE
1 tribus: Cardueae;
CICHORIOIDEAE
4 tribus: Arctotideae, Cichorieae,
Liabeae, Vernonieae;
ASTEROIDEAE
15 tribus: Anthemideae, Astereae,
Bahieae, Calenduleae, Coreopsideae, Eupatorieae, Gnaphalieae, Helenieae,
Heliantheae, Inuleae, Millerieae, Neurolaeneae, Perityleae, Senecioneae,
Tageteae.
Tabla 3: Arreglo de los 282 géneros en las 23 tribus
de Asteraceae en la Flora Mesoamericana.
I. Anthemideae
Achillea, Anthemis, Argyranthemum, Artemisia, Chrysanthemum, Cotula, Glebionis,
Leucanthemum, Matricaria, Tanacetum;
II. Arctotideae
Arctotis;
III. Astereae
Archibaccharis, Astranthium, Baccharis, Bellis, Callistephus,
Chloracantha, Conyza, Dichrocephala, Diplostephium, Egletes, Erigeron,
Grindelia, Gymnosperma, Heterotheca, Laennecia, Laestadia, Osbertia, Pityopsis,
Psilactis, Solidago, Symphyotrichum, Talamancaster, Westoniella;
IV. Bahieae
Achyropappus, Espejoa, Florestina, Loxothysanus, Schkuhria;
V. Calenduleae
Calendula, Dimorphotheca;
VI. Cardueae
Carthamus, Centaurea, Cirsium,
Cynara, Silybum;
VII. Cichorieae
Cichorium, Crepis, Hieracium,
Hypochaeris, Lactuca, Launaea, Pinaropappus, Sonchus, Taraxacum, Tragopogon,
Youngia;
VIII. Coreopsideae
Bidens, Chrysanthellum,
Coreopsis, Cosmos, Dahlia, Electranthera, Goldmanella, Heterosperma, Hidalgoa;
IX. Eupatorieae
Adenocritonia, Adenostemma,
Ageratina, Ageratum, Amolinia, Austroeupatorium, Ayapana, Bartlettina,
Blakeanthus, Brickellia, Campuloclinium, Carminatia, Chromolaena, Condylidium,
Conoclinium, Critonia, Critoniadelphus, Decachaeta, Eupatoriastrum, Eupatorium,
Fleischmannia, Fleischmanniopsis, Gongrostylus, Gymnocoronis, Hebeclinium,
Heterocondylus, Hofmeisteria, Iltisia, Isocarpha, Koanophyllon, Macvaughiella,
Matudina, Microspermum, Mikania, Neomirandea, Nesomia, Oxylobus, Pachythamnus,
Peteravenia, Piptothrix, Piqueria, Polyanthina, Pseudokyrsteniopsis,
Sciadocephala, Standleyanthus, Stevia, Tuberostylis, Zyzyura;
X. Gnaphalieae
Achyrocline, Chionolaena, Gamochaeta,
Gnaphalium, Pseudognaphalium, Xerochrysum;
XI. Helenieae
Gaillardia, Helenium, Hymenoxys;
XII. Heliantheae
A. Heliantheae
subtribus Ambrosiinae
Ambrosia, Parthenium, Xanthium;
B. Heliantheae
subtribus Ecliptinae
Baltimora, Calyptocarpus, Clibadium, Delilia, Eclipta, Elaphandra,
Eleutheranthera, Iogeton, Jefea, Lasianthaea, Lundellianthus, Melanthera,
Oblivia, Otopappus, Oyedaea, Perymenium, Plagiolophus, Rensonia, Riencourtia,
Sphagneticola, Synedrella, Tilesia, Tuxtla, Wamalchitamia, Wedelia, Zexmenia;
C. Heliantheae
subtribus Enceliinae
Flourensia;
D. Heliantheae
subtribus Engelmanniinae
Borrichia;
E. Heliantheae
subtribus Helianthinae
Aldama, Garcilassa, Helianthus, Heliomeris, Iostephane, Lagascea,
Sclerocarpus, Simsia, Tithonia, Viguiera;
F. Heliantheae
subtribus Montanoinae
Montanoa
G. Heliantheae
subtribus Montanoinae
Rojasianthe;
H. Heliantheae
subtribus Spilanthinae
Acmella, Salmea, Spilanthes;
I. Heliantheae
subtribus Verbesininae
Podachaenium, Squamopappus, Tetrachyron, Verbesina;
J. Heliantheae
subtribus Zinniinae
Echinacea, Heliopsis,
Philactis, Sanvitalia, Tehuana, Zinnia;
XIII. Inuleae
Epaltes, Pluchea, Pseudoconyza,
Pterocaulon, Tessaria;
XIV. Liabeae
Erato, Liabum, Munnozia,
Oligactis, Sinclairia;
XV. Millerieae
Acanthospermum, Alepidocline,
Alloispermum, Cuchumatanea, Desmanthodium, Galinsoga, Guizotia, Ichthyothere,
Jaegeria, Melampodium, Milleria, Oteiza, Rumfordia, Sabazia, Schistocarpha,
Selloa, Sigesbeckia, Smallanthus, Tridax, Trigonospermum, Unxia;
XVI. Mutisieae
Adenocaulon, Chaptalia, Gerbera, Leibnitzia;
XVII. Nassauvieae
Acourtia, Jungia, Trixis;
XVIII. Neurolaeneae
Calea, Enydra, Neurolaena;
XIX. Onoserideae
Lycoseris, Onoseris;
XX. Perityleae
Galeana, Perityle;
XXI. Senecioneae
Barkleyanthus, Charadranaetes, Crassocephalum, Delairea, Digitacalia, Dresslerothamnus,
Emilia, Erechtites, Euryops, Gynura, Jessea, Kleinia, Monticalia,
Nelsonianthus, Ortizacalia, Pentacalia, Pittocaulon, Psacaliopsis, Psacalium,
Pseudogynoxys, Robinsonecio, Roldana, Senecio, Talamancalia, Telanthophora,
Villasenoria, Werneria, Género A;
XXII. Tageteae
Adenophyllum, Comaclinium, Dyssodia, Flaveria, Gymnolaena, Pectis,
Porophyllum, Tagetes;
XXIII. Vernonieae
Centratherum, Cyanthillium, Cyrtocymura, Eirmocephala, Elephantopus,
Eremosis, Harleya, Lepidaploa, Lepidonia, Lessingianthus, Orthopappus,
Pacourina, Piptocarpha, Piptocoma, Pseudelephantopus, Rolandra, Spiracantha,
Stenocephalum, Struchium, Trichospira, Vernonanthura, Vernonia.
Tabla 4. Especies endémicas por región.
Región | Especies endémicas |
Belice | 7 |
Costa Rica | 64 |
El Salvador | 4 |
Guatemala | 68 |
Honduras | 8 |
México (Chiapas) | 29 |
México (Tabasco, Campeche, Yucatán, Quintana Roo) | 6 |
Nicaragua | 9 |
Panamá | 31 |
Tabla 5. Géneros endémicos (21) de Asteraceae mesoamericanos.
Género | Tribus | Endémicos de un solo país |
Amolinia | Eupatorieae | |
Blakeanthus | Eupatorieae | |
Charadranaetes | Senecioneae | Costa Rica |
Comaclinium | Tageteae | |
Critoniadelphus | Eupatorieae | |
Cuchumatanea | Millerieae | Guatemala |
Goldmanella | Coreopsideae | |
Harleya | Vernonieae | |
Iltisia | Eupatorieae | |
Iogeton | Heliantheae | Panamá |
Jessea | Senecioneae | |
Matudina | Eupatorieae | México |
Nesomia | Eupatorieae | México |
Ortizacalia | Senecioneae | Costa Rica |
Plagiolophus | Heliantheae | México |
Pseudokyrsteniopsis | Eupatorieae | |
Rojasianthe | Heliantheae | |
Squamopappus | Heliantheae | |
Standleyanthus | Eupatorieae | Costa Rica |
Westoniella | Astereae | |
Zyzyura | Eupatorieae | Belice |